Introducción a la Ingeniería Genética

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En la era de la Proteómica y de otras aproximaciones de la Biología de Sistemas, olvidamos ir a los cimientos del conocimiento. Conocer el detalle de los bloques que forman a las proteínas, su interacción y sus propiedades facilitan posteriormente comprender cómo es el arreglo estructural de estas importantes biomoléculas. El fin último de este conocimiento es entender la función de los robots biológicos que son las proteínas.

Objetivo

A través del curso Introducción a la Ingeniería Genética los alumnos se familiarizarán, experimentarán y manejarán las técnicas básicas de uso común en las áreas experimentales de Bioquímica y Biología Molecular, al mismo tiempo que analizarán y comprenderán los principios teóricos que las sustentan.

Destinatarios

Estudiantes del posgrado del CIBNOR que preferentemente hayan cursado la materia de Biología Molecular y Celular (clave 9301) que se ofrece anualmente en el Programa de Posgrado del CIBNOR en el trimestre Enero-Abril, o que tengan bases sólidas de Bioquímica a nivel posgrado. Este curso se ofrece anualmente durante el trimestre Abril-Junio, como parte de la cartera de cursos del Programa de Posgrado del CIBNOR.

Modalidad

CURSO MIXTO. Es un curso teórico-práctico (30%-70%), en el que se abordan las técnicas básicas de uso común en biología molecular, a través de las cuales los alumnos adquirirán habilidades y capacidades técnicas y analizarán los conceptos teóricos que les permitan tomar decisiones y plantear esquemas de trabajo para abordar de una forma adecuada problemas científicos específicos. La mayoría de la teoría puede ser revisada ONLINE con acceso las 24 hs. Esta parte del curso se realiza en la plataforma del CIBNOR (Moodle).  La evaluación tendrá en cuenta tu participación activa según las Pautas del Curso.

Programa

1. INTRODUCCIÓN AL CURSO

1.1 Análisis de secuencia

1.2 Bioquímica “in vivo”

1.3 Sobreproducción de componentes celulares

2. MODULO I

2.1 Introduccion a proteínas

2.1.1 Composición y tamaño de las proteínas

2.1.2 Clasificación de las proteínas

2.1.3 Órdenes de la estructura proteica

2.1.4 Electroforésis en geles de poliacrilamida

2.1.5 Soportes

2.1.6 Electroforesis nativa y desnaturalizante

Práctica I. Extracción de proteínas solubles.

Práctica II. Cuantificación de proteínas.

Práctica III. Electroforésis en geles de poliacrilamida.

2.2 Introducción a inmunodetección.

2.2.1 Inmunoglobulinas

2.2.2 Western blot

2.2.3 Técnicas alternativas de transferencia

Práctica IV. Western blotting.

2.3 Introducción a ácidos nucleicos y electroforésis

2.3.1 Ácido desoxiribonucleico

2.3.2 Ácido ribonucleico

2.3.3 Electroforésis en geles de agarosa

Práctica V. Aislamiento de ácido desoxiribonucleico y electroforésis.

Práctica VI. Aislamiento de ácido ribonucleico y electroforésis.

2.4 Introducción a la Transferencia (blotting) de ácidos nucleicos

2.4.1 Southern blotting

2.4.2 Northern blotting

2.4.3 Hibridación

Práctica VII. Transferencia (blotting) de ácidos nucleicos.

3. MODULO II

3.1 Introducción a transformación y ADNp

3.1.1 Propiedades básicas de los plásmidos

3.1.2 Purificación de ADN plasmídico

3.1.3 Transformación

Práctica VIII. Transformación.

Práctica IX. Purificación de ADN plasmídico

3.2 Introducción corte y ligamiento de ADN

3.2.1 Cortando moléculas de ADN

3.2.2 Modificación y restricción controlada por el hospedero

3.2.3 Endonucleasas o enzimas de restricción

3.2.4 Uniendo moléculas de ADN

3.2.5 ADN ligasa

Práctica X. Corte y ligamiento de ADN.

4. MODULO III

4.1 Introducción a la reacción en cadena de la polimerasa (PCR)

4.1.1 Reacción en cadena de la polimerasa punto final

4.1.2 Reacción en cadena de la polimerasa cuantitativa

Práctica XI. Reacción en cadena de la polimerasa punto final (PCR)

Práctica XII. Reacción en cadena de la polimerasa en tiempo real (qPCR)

4.2 Introducción a la secuenciación

4.2.1 Métodos de Maxam-Gilbert

4.2.2 Método de Sanger

Carga horaria:

El curso tiene una duración de 73 horas (repartida en 2 sesiones semanales de 3 horas) y una equivalencia crediticia igual a 6.

Constancia

N/A

Detalles

Escrito por: Hector Campos Cruz

Última actualización: 21 May 2019

Acompañamiento Psicológico Estudiantil

Detalles

Escrito por: Horacio Sandoval Gómez

Última actualización: 03 Diciembre 2025

Leer más: Acompañamiento Psicológico Estudiantil

Artículos Publicados (2019)

Revistas con Arbitraje, en Base de Datos del ISI

1. Aragón-Noriega, E.A., E. Alcántara-Razo, R. Cruz-Vásquez, S.G. Castillo-Vargasmachuca, G. Rodríguez-Domínguez, J.T. Ponce-Palafox & J.A. López-Sánchez. 2019. Growth variations in the Geoduck Panopea globosa in different climatological regions of Northwestern Mexico. J Shellfish Res. 38(2):279-286. (F.I. 0.951)
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2. Aragón-Noriega, E.A., E. Alcántara-Razo, J.G. Padilla-Serrato, G. Rodríguez-Domínguez, and S.G. Castillo-Vargasmachuca. 2019. Morphological notes on Pinnaxodes gigas green, 1992 (Brachyura, Pinnotheridae) emphasizing on length-weight relationship under multi-model approach. Crustaceana. 92(9):1081-1097. (F.I. 0.794)
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3. Arambul-Muñoz, E., J.T. Ponce-Palafox, R. Claro-De-Los-Santos, E.A. Aragón-Noriega, G. Rodríguez-Domínguez y S.G. Castillo-Vargasmachuca. 2019. Influence of stocking density on production and water quality of a photo-heterotrophic intensive system of white shrimp (Penaeus vannamei) in circular lined grow-out ponds, with minimal water replacement. Lat Am J Aquat Res. 47(3):449-455. (F.I. 0.482)
4. Cisneros-Mata, M.A., A. Munguía-Vega, D. Rodríguez-Félix, E.A. Aragón-Noriega, J.M. Grijalva-Chon, J.A. Arreola-Lizárraga & L.A. Hurtado. 2019. Genetic diversity and metapopulation structure of the brown swimming crab (Callinectes bellicosus) along the coast of Sonora, Mexico: Implications for fisheries management. Fish Res. 212:97–106. (F.I. 1.874)
5. Estrada-Pérez, N., J.M.J. Ruiz-Velasco, F.J. Magallón-Barajas, A.I. Campa-Córdova and A. Hernández-Llamas. 2019. Dynamic stock model for analysing semi‐intensive production of whiteleg shrimp Litopenaeus (Penaeus) vannamei affected by the acute hepatopancreatic necrosis disease: Assessment of disease severity indicators and relationships with pond water quality parameters. Aquac Res. En prensa [DOI: 10.1111/are.14370]. (F.I. 1.475)
6. Hernández-Llamas, A., L. Núñez-Amao, J. Naranjo-Páramo, M. Vargas-Mendieta and H. Villarreal-Colmenares. 2019. A review of alternative pond harvesting schedules for male and female redclaw crayfish Cherax quadricarinatus, reared in intensive monosex commercial conditions: a stochastic bioeconomic approach. Rev Aquac. En prensa [doi: 10.1111/raq.12343]. (F.I. 7.139)
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7. Méndez-Martínez, Y., Y. Pérez, D.M. Verdecia, E. Cortés-Jacinto, O.F. Cevallos-Falquez and O. Romero. 2019. Efecto de la inclusión de harina de Azolla filiculoides en el crecimiento y supervivencia de alevines de tilapia roja (Oreochromis mossambicus x O. niloticus). Cuban J Agr Sci. 53(2):289-298. (F.I. 0.052*)
   * NOTA: Factor ISI del 2009
8. Palacios-Salgado, D.S., L. Campos-Dávila, J. Granados-Amores, V.H. Cruz-Escalona, M.S. Peterson, X.G. Moreno-Sánchez, R. Aguilar-Medrano, J.R. Flores-Ortega y L.A. Abitia-Cárdenas. 2019. Functional diversity in fish assemblages of the Tropical Eastern Pacific Ocean: A review of two decades of progress in the functional diversity approach. Hidrobiológica. 29(1):1-24. (F.I. 0.312)
9. Pérez-Rodríguez, J.C., J. Gómez-Gutiérrez, L.S. López-Greco, E. Cortés-Jacinto. 2019. Spermatophore production and sperm quality of the river prawn Macrobrachium americanum Spence Bate, 1868 fed with different diets. Aquac Res. En prensa [DOI: 10.1111/are.14265]. (F.I. 1.475)
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10. Reynaga-Franco, F.J., E.A. Aragón-Noriega, J.M. Grijalva-Chon, R. Castro-Longoria, J.A. Arreola-Lizárraga, R.H. Barraza-Guardado & J. Chávez-Villalba. 2019. Multi-model inference as criterion to determine differences in growth patterns of distinct Crassostrea gigas stocks. Aquacult Int. 1-16. (F.I. 1.283) Publicado en línea: https://doi.org/10.1007/s10499-019-00396-0
11. Rojas, M.; Jimenez-Bremont, F.; Villicaña, C.; Carreón-Palau, L.; Arredondo-Vega, B.O. and Gómez-Anduro, G. 2019. Involvement of OpsLTP1 from Opuntia streptacantha in abiotic stress adaptation and lipid metabolism. Functional Plant Biology. 46(6):816-829. (F.I. 2.083)

Detalles

Escrito por: Horacio Sandoval Gómez

Última actualización: 01 Junio 2021

Fechas: Doctorado en Bioeconomía

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Escrito por: Horacio Sandoval Gómez

Última actualización: 09 Marzo 2026